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资源类型: 中文期刊
关键词:CTAB(模糊匹配)
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槭树叶片总RNA提取技术优化

《山东林业科技 》 2013

摘要:以槭树品种‘秋天火焰’和‘冷俊’秋季变色叶片为试材,采用传统CTAB、CTAB-LiCl、RNeasy Plant Mini Kit试剂盒3种方法提取槭树叶片总RNA,进行提取体系优化,建立了高效、高质量RNA提取技术体系,为下一步的基因克隆奠定了基础。

关键词: 槭树 RNA CTAB

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CTAB法少量快速提取花生基因组DNA

《山东农业科学 》 2012

摘要:比较了两种改进的基因组DNA提取方法,并应用于SSR扩增分析。结果表明,CTAB法是一种快捷有效的提取基因组DNA的方法,能完全满足SSR分子标记的分析要求。

关键词: 花生 基因组DNA CTAB SSR

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CTAB法提取花生总DNA在SSR和SRAP中的扩增效果

《花生学报 》 2008

摘要:本试验采用相对简单快捷的CTAB法提取花生总DNA,并应用于SSR和SRAP扩增分析,结果表明,所提取花生DNA中RNA含量高,但完全可以满足SSR标记和SRAP标记分析要求。

关键词: 花生 CTAB SSR SRAP

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一种提取核桃基因组DNA的改进方法

《山东农业科学 》 2008

摘要:以核桃幼嫩叶片为材料,针对核桃体内富含酚类、多糖等次生物质,采用改良的CTAB法,提取其基因组DNA,经0.8%琼脂糖凝胶电泳检测,蛋白、多糖、RNA等去除较干净,适用于分子标记及其分子生物学的研究。

关键词: 核桃 CTAB DNA提取

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马铃薯块茎中总RNA的快速提取

《生物技术通报 》 2007 CSCD

摘要:马铃薯块茎中由于含有大量的多糖和酚类物质,因此难以从中提取RNA。本实验采用CTAB法从马铃薯块茎中提取了总RNA,并进行了马铃薯病毒的检验。结果表明:得到的RNA完整性好,A260/A280在1.7~2.0范围内,纯度也比较高。用RT-PCR方法进行马铃薯Y病毒的检验,得到了一条与预计扩增长度相同的一条带,并检验出枣庄地区马铃薯Y病毒的感染率为75%。

关键词: 马铃薯块茎 总RNA提取 CTAB

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RAPD技术在玉米品种纯度鉴定中的应用研究

《山东农业科学 》 2003

摘要:本研究以10个玉米自交系和用它们配制的7个杂交种为试验材料,利用CTAB微量提取法从幼苗中提取DNA,进行RAPD扩增,以发现不同品种间的特征谱带。研究表明,以筛选出的扩增效果较好的OPX03为引物,对17个材料进行RAPD电泳图谱分析,品种间图谱差异明显,很容易区分。说明RAPD技术应用于玉米品种鉴定和纯度分析是切实可行的。

关键词: RAPD 玉米 CTAB 品种鉴定和纯度分析

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CTAB法提取大蒜、白菜基因组DNA

《山东农业大学学报(自然科学版) 》 2000 北大核心 CSCD

摘要:在分子生物学研究中 ,提取DNA对于试验成功极其重要。由于植物材料好处理 ,其DNA更难提取。而且种类繁多的植物所含化合物 (如多糖、脂肪、单宁类物质、酚类及色素物质 )不同 ,因而对于一种植物材料适用的DNA提取方法应用于其它植物材料不一定成功。有的植物DNA提取方法由于产量低 ,需要大量的样品组织 ;这对于需要从许多少量样品个体中提取DNA的研究不适用。CsCl梯度离心的方法既费时又昂贵。近年来已经建立了许多简便、经济的方法 ,使用这些方法能从少量样品组织中提取高产量的DNA ,CTAB法是其中之一。该法使用CTAB(十六烷基三甲基溴化胺 )作为DNA提取剂〔2 ,3〕。大蒜、白菜、萝卜等组织细胞中富含粘液 (其成分主要为多糖 ) ,DNA不易提取。我们在J Doyle和L Doyle建立的CTAB法基础上摸索了大蒜、白菜DNA提取的条件 ,并作了适当改进〔1〕,测定了该法提取的大蒜、白菜DNA的产量和质量 ,并以其为模板进行了RAPD操作。1 材料与方法1 1 材料国内及国外 60多个大蒜品种中 ,2 4个白菜品种和 7个萝卜品系。1 2 DNA提取过程中所用溶液及试剂2×CTAB缓冲液 :   1 0 0mmol/LTris-Cl(pH 8 0 )2 0mmol/LEDTA (pH 8 0 )1 4mmol/LNaCl2 %CTAB氯仿 /异戊醇 (2 4∶1 )异丙醇75%乙醇1 0mg/mlRnaseTE缓冲液 (pH 8 0 )1 3 DNA提取步骤1 )用蒸馏水把样品材料冲洗干净 ,用吸水纸吸去材料表面的水分。称取幼嫩叶片 (或其它组织 )约 0 1~ 0 3g ,置于研钵或塑料袋中 ,加2mlCTAB提取液 ,充分研磨。2 )取 1 0ml到 1 5ml离心管中 ,65℃水浴中置 30min。3)加入氯仿 /戊醇至满 ,混匀。4) 1 50 0 0r/min简单离心 ,转移上清到一个新管中 ,并加入 60 0 μl异丙醇。5)小心颠倒离心管数次 ,稍离心 ,去掉上清 ,加入 80 0 μl 75%乙醇清洗沉淀。6)离心 ,倒掉上清 ,再次清洗。7)室温下吹干DNA ,加入 1 0 0 μlTE缓冲液和 2 μlRnase。8)置于 - 2 0℃贮存。1 4 DNA的浓度和质量的检测琼脂糖凝胶电泳法 :取 1 μl提取的DNA ,加入 9μlTE染料 ,1 0 %浓度的琼脂糖凝胶电泳 ,溴化乙锭染色后 ,紫外分析仪上观察。紫外分光光度计法 :用蒸馏水将提取的DNA稀释 1 0 0 0倍 ,在BerkmanDU640紫外分光光度计上测量 2 60nm和 2 80nm处的OD值。1 5 DNA浓度与纯度用这种方法提取大蒜DNA ,浓度通常在50 0ng/μl左右 ,提取白菜、萝卜DNA ,浓度在2 0 0ng/μl左右 (表 1 ,表 2 )。表 1 大蒜DNA浓度 (ng/ μl )Table 1GarlicDNAconcentration (ng/ μl)DNA编号浓度(ng/ μl)DNA编号浓度(ng/ μl)DNA编号浓度(ng/ μl)DNA编号浓度(ng/ μl)16 0 16 5 0 3115 0 46 2 5 02 5 0 0 1740 32 12 5 472 5 03 2 5 0 1810 0 33 5 0 0 4812 546 0 192 0 345 0 4912 55微量 2 0— 35 5 0 5 0 306微量 2 12 40 36 10 0 5 13576 0 2 2 2 5 0 3712 5 5 2 3586 0 2 3 2 40 386 5 5 3—96 0 2 4— 396 5 5 42 510 6 0 2 5 2 0 0 40 12 5 5 5 6 511— 2 6 2 0 0 416 5 5 6 10 012 80 2 715 0 42 12 5 5 76 513 10 0 2 815 0 43 12 5 5 810 014— 2 95 0 0 4412 5 5 912 515 6 0 30 5 0 0 45— 6 0 2 5 01 6 RAPD扩增扩增在PTC - 51BDNAThermalCyclerPCR仪上进行 ,每 2 0 μl反应液中含 1 0mmol/LTris -Cl (pH 8 3) ;50mmol/LKCl;3mmol/LMgCl;2 0 0 μmol/LdNTPs,0 2 μmol/Lprimer,0 5unitTaqpolymerase及 4~ 40ng模板DNA。反应条件为 :95℃ 5min ,然后 94℃ 1min ,35℃ 80s,72℃ 2min ,运行 40个循环 ,之后 72℃延伸 5min。扩增产物用 1 6%琼脂糖凝胶电泳分离 ,溴化乙锭染色后 ,紫外分析仪上观察并照像。表 2 白菜、萝卜DNA浓度 (ng/ μl)Table 2DNAconcentrationofChinesecabbageandradish (ng/ μl)种类 DNA编号浓度(ng/ μl)DNA编号浓度(ng/ μl)DNA编号浓度(ng/ μl)DNA编号浓度(ng/ μl)白菜 112 5 7— 13 10 0 192 5 02 2 5 0 810 0 14 10 0 2 0 12 53 2 5 0 915 0 15 2 5 0 2 1—410 0 10 130 16 30 2 2 2 5 05— 1115 0 172 5 0 2 3 2 5 06 12 5 12 12 5 1812 5 2 412 5萝卜 12 5 0 3 2 5 0 5 2 0 0 75 0 02 12 5 42 0 0 6 5 02 结果与分析2 1 提取液中CTAB浓度的确定以金乡白蒜贮藏鳞茎为DNA提取材料为例 ,改变提取液中CTAB的浓度对DNA提取的影响见表 3。表 3提取液中CTAB浓度对大蒜DNA产量和质量的影响Table 3InfluenceoftheCTABconcentrationon yieldandqualityoftheextractedgarlicDNACTAB浓度(% ) 12 46DNA产量(ng/mg鲜重 ) 2 6 45 5 0 5 1DNA质量(A2 6 0 /A2 801 5 1 81 81 7由上表可看出 ,提取液中CTAB浓度在 2 %~ 4%之间DNA产量较大 ,且纯度也较高。当CTAB浓度超过 4% ,DNA产量的增加不再明显 ,且DNA质量下降。这可能是由于清洗DNA沉淀时CTAB易清除不干净造成的。当CTAB浓度低于 2 %时 ,DNA产量和质量都明显下降。因此 ,提取液中CTAB浓度确定为 2 %~ 4%。2 2 液氮处理对DNA提取的影响以金乡白蒜贮藏鳞茎为DNA提取材料 ,比较液氮处理和无液氮处理所得DNA的差别。我们发现 ,处理项除DNA产量上有明显提高外(大约 2倍 ) ,与非处理项在DNA质量上无明显差异。液氮处理能提高DNA产量的原因可能是材料经液氮处理后变脆 ,从而使材料研磨得更为充分。为了简便操作 ,我们在大蒜DNA提取时不再使用液氮处理。2 3 不同取样对DNA提取的影响分别以金乡白蒜田间幼叶、室内黄化苗和贮藏鳞茎为样品进行DNA提取。提取结果见表 4。表 4 不同取样对大蒜DNA提取的影响Table 4InfluenceofthedifferentsamplingsonisolationofgarlicDNA田间幼叶室内黄化苗贮藏鳞茎DNA产量(ng/mg样品 ) 6 0 15 0 5 0DNA质量(A2 6 0 /A2 80 ) 1 81 81 8由表 4看出 ,室内黄化苗DNA产量最高 ,其次是田间幼叶 ,最后是贮藏鳞茎。2 4 简化DNA提取液成分对DNA产量和质量的影响我们在提取液不加PVP40和 2 -巯基乙醇 ,用此简化提取液分别提取金乡白蒜田间幼叶、室内黄化苗和贮藏鳞茎的DNA。结果中可以看出 ,提取液的简化对贮藏鳞茎DNA的提取影响不大 ,而田间幼叶和室内黄化苗提取的DNA发生降解。可能是由于幼叶中核酸酶活性较高所致。2 5 不同大蒜品种提取DNA的产量与质量差别应用该法对 60多个大蒜品种进行了DNA提取 ,除个别品种 (澳引 9号 ,澳引 8号 )提取的DNA呈一定降解状外 ,大部分质量很好 ,背景清淅 ,产量在 1 0~ 2 0 0ng/mg之间。2 6 用提取的DNA作RAOD试验  RAPD扩增对DNA模板的要求不是很高 ,RNA有无和带有少量蛋白质据认为不会影响扩增。但是一些多糖、酚类物质及色素等会严重影响Tag酶的活性 ,从而导致扩增失败。大蒜组织中富含粘性多糖 ,DNA不易提取 ,采用CTAB法可以有效地解决这个问题 ,并且不用液氮处理 ,省去打破休眠及室内发芽等步骤 ,所得DNA的产量和纯度均能满足RAPD要求 (见图 1 )。图 1 大蒜DNARAPD试验Fig 1RAPDassayusingtheextractedgarlicDNA说明 :1 DNA标记 (LamberdaDNAMark er)。2 1 4个大蒜品种 (1 4garlicLines)。引物为opronNo 5CTAB法提取大蒜、白菜基因组DNA@曲士松$山东省农业科学院蔬菜研究所!济南250100 @刘宪华$山东省农业科学院蔬菜研究所!济南250100 @黄宝勇$山东省农业科学院蔬菜研究所!济南250100 @王淑芬$山东省农业科学院蔬菜研究所!济南250100 @徐培文$山东省农业科学院蔬菜研究所!济南250100DNA提取;;大蒜;;白菜;;CTAB〔1〕Doyle ,J J andDoyle ,J L ,Amer J Bot 1988,75 ,12 88 〔2〕Scotto ,O Rogers&ArnoldJ Bendch ,ExtractionofDNAfromplanttissues PlantMolecularBiologyMannul 1988 〔 3〕Murray ,H G Thomspon ,W F RapidisolationofhigherweightDNA NucleicAcidRes 1980 8,432 1

关键词: DNA提取 大蒜 白菜 CTAB

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